emsa实验原理新上映_emsa实验结果分析(2024年12月抢先看)
DAP-seq常见问题解答,一文搞定! 1. DAP-seq技术原理与流程 技术原理:DAP-seq通过体外表达蛋白与DNA进行亲和纯化,洗脱后进行高通量测序,从而找到转录因子的结合位点。 技术流程:构建含有亲和标签的载体,体外表达转录因子与亲和标签的融合蛋白,提取基因组DNA并构建DNA文库。将体外表达的转录因子与DNA文库结合,洗脱后上机测序。 解决的问题:快速定位转录因子的结合位点,发现转录因子调控的靶基因。 所需材料 组织材料或提取好的基因组DNA 目标蛋白质粒(含有完整目标蛋白序列的质粒,如转录因子) 实验成功率 不同转录因子家族的成功率有所不同,具体成功率可参考相关资料。 重复次数 实验包含两个技术重复,以确保结果的可靠性。 𑠦䍧駻织样本要求 植物组织样本的取样时期和部位根据研究需求确定,不同组织和时期DNA的修饰可能影响蛋白与DNA的结合。 전AP-seq与ChIP-seq的区别 DAP-seq不需要针对每个转录因子制备特异性抗体,具有快速、高通量和节约时间成本的优势。 Input对照 Input对照用于降低背景噪音,是亲和纯化前的文库。 Peak数目少的结果可用吗? 虽然DAP-seq的peak数目较少,但建议仍然对现有结果进行分析,可能挖掘出亮点结果。 젩ꌨAP-seq结果 DAP-seq结果一般需要验证,验证手段包括EMSA、酵母单杂等实验。如果通过前期大量转录因子筛选出候选转录因子,也可以考虑体内ChIP等验证。
WB实验必备试剂大揭秘 在WB实验中,各种试剂扮演着至关重要的角色。你是否也对这些试剂的作用感到困惑?今天我们就来详细解析一下这些试剂的功能 1⃣ SDS SDS,即十二烷基硫酸钠,是一种表面活性剂、洗涤剂和乳化剂。蛋白质的三维结构复杂且带有不同电荷,这会影响其在凝胶中的电泳迁移速率。SDS的作用是使蛋白样本变性,结合在蛋白表面并使其带上负电荷,从而只根据分子量大小产生不同的迁移速度,最终使大小不同的蛋白分开。 2⃣ 巯基乙醇 巯基乙醇是一种还原剂,外观为无色的透明液体,闻起来有强烈的刺激性气味,且对人体有刺激性。在WB实验中,它可以打开蛋白里半胱氨酸残基之间的二硫键,切割二硫键可以破坏蛋白的二级结构,使得蛋白样本在电泳过程不受二级结构的影响。 3⃣ 聚丙烯酰胺 聚丙烯酰胺凝胶是一种聚合物,由丙烯酰胺单体和交联剂组成。通过改变单体和交联剂的比例以及聚合条件,可以调节聚丙烯酰胺凝胶的孔径大小和分辨率范围。浓度越高,形成的孔径越小,更易于分辨小分子。在Western blot实验中,不同分子量的蛋白质在凝胶中迁移速率不同,分子量较小的蛋白质迁移速率快,而分子量较大的蛋白质迁移速率慢,因此可以通过电泳分开不同大小的蛋白。 4⃣ 吐温20 吐温20是一种非离子型去垢剂,通常是黄色或琥珀色澄明的油状液体,非常粘稠。在WB实验中,通常会在封闭液或抗体洗涤液中加入吐温20,起到封闭的非特异性的作用。 5⃣ TEMED TEMED中文名称是四甲基乙二胺,是一种促凝剂。在配置SDS聚丙烯酰胺凝胶时,与过硫酸铵 (APS)一起使用,促进凝胶凝固。但是TEMED有神经毒性,应该在通风橱操作。 6⃣ Tris HCl Tris HCl是一种常见的缓冲液,在WB实验中,电泳液及制胶都需要用到Tris HCl,主要作用是维持稳定的pH值。 通过了解这些试剂的作用,你可以更好地理解和掌握WB实验的原理和技巧。
EMSA实验:GST/His-a融合蛋白的表达 GST/His-a融合蛋白的表达 (1)将目的蛋白与GST/His的重组质粒转化到BL21菌株中; (2)挑取单克隆到含有5 ml LB培养基(加入5 氨苄)的10 ml试管里,37℃恒温振荡培养箱中培养过夜; (3)将培养菌液转移到含有500 ml LB(含500 氨苄)的1L锥形瓶中,37℃,200 rpm培养数小时; (4)测定OD600值,当OD600达到0.6左右时,加入适当浓度的IPTG,在20℃,200rpm条件下培养10-16 h(通常需要进行预实验以确定最佳IPTG浓度、诱导温度和时间); (5)诱导适当时间后,将菌液分次倒入50 ml离心管中,4℃ 4000 rpm离心10分钟,然后弃去上清,收集管底菌体,如暂时不用,可将菌体保存于-80℃冰箱中; (6)先加入少量PBS于离心管中,离心5-10 min后弃去上清,再按每10 ml菌液沉淀1 ml PBS的量加入相应的PBS,涡旋振荡,使菌体沉淀充分溶解于PBS溶液中; (7)把混合菌体置于冰水浴中,用超声仪进行破碎。每次超声破碎20 s,间隔30 s(破碎时间、破碎次数和间隔时间视具体情况而定),经过适当时间超声后,溶液会显得澄清; (8)将超声后的溶液4℃ 4000 rpm离心10分钟,上清液转移至新的离心管中,-80℃保存备用。 凝胶迁移( EMSA )实验技术方法步骤已分享,如有相关科研问题,欢迎留言探讨。 #研究生日常#⠂ #EMSA#⠂ #凝胶迁移实验#⠂ #蛋白表达#⠂ #实验外包#
EMSA实验揭秘:凝胶迁移 凝胶电泳: 在开始EMSA实验之前,首先需要制备6.5%的凝胶。与常规的凝胶电泳不同,EMSA实验无需分离胶和浓缩胶。在加入10%的过硫酸铵(AP)之前,确保凝胶在室温下静置10分钟以去除气泡。然后,加入10%的AP并混匀,灌胶。 砩℧ 在加样电泳之前,进行预电泳以去除残余的杂质。使用预冷的0.5㗔BE缓冲液,以100V恒压电泳30-60分钟。预电泳过程中,用移液器反复冲洗上样孔3-5次。 ꠥ𖦠𗯼 根据表格中的mix配方,配置反应体系。由于样品数量较多,建议使用mix混合液以减少加样误差并节省操作时间。将配置好的反应体系分装到标记好的PCR管中,依次加入双蒸水、核蛋白和生物素标记的探针,室温孵育10分钟。 上样: 孵育结束后,加入5的Loading Buffer,轻轻吹打混匀,准备上样。在电泳结束前,配置好0.5㗔BE电转移缓冲液并放置于冰箱预冷。将样品加载到样品孔中,以100V恒压低温条件下电泳45分钟,至指示剂到达胶的2/3处。 转膜: 电泳结束后,小心地从电泳装置中移走一片玻璃片,去掉样品孔的凝胶。将凝胶与另一片玻璃一起移入装有0.5㗔BE的盒子中,让凝胶与玻璃板分离并漂浮在缓冲液中。 砦𘎨 将尼龙膜、同胶一样大小的厚滤纸及海绵垫在0.5㗔BE中浸泡10分钟。在转印夹的黑色面板中心依次放置海绵垫、至少3层印迹滤纸、转印膜、胶和至少3层滤纸。用玻璃试管在滤纸上轻轻滚动,以驱赶气泡。 頤: 将装配好的电转移夹放入电转移槽中,在0.5㗔BE中以100V恒压转45分钟。转膜结束后,将膜放置于干净滤纸上,膜正面朝上,放置在紫外灯下10厘米处,交联20分钟,交联前保持膜湿润。
EMSA实验数据分析与注意事项全解析 在进行EMSA实验时,数据分析是关键的一步。通常,我们可以从两个方面来分析数据:底部的自由探针和上方的迁移条带(蛋白-DNA复合物)。当蛋白与DNA发生相互作用时,底部的自由探针会减少,而迁移条带的亮度则会增强。 数据分析 在加入等量标记探针的前提下,如果增加未标记的野生型探针,它会与标记探针竞争蛋白,导致自由探针条带强度基本不变,而迁移条带亮度减弱。相反,如果增加未标记的突变探针,由于蛋白不结合该序列,突变探针不与标记探针竞争,因此自由探针减少,迁移条带亮度增强。 注意事项 探针长度:合成的探针长度在40–60bp左右,这样有利于非结合探针和蛋白-DNA复合体的分离。 探针保存:标记好的探针若不立即使用,可以保存于–30 Ⰳ冰箱中,再次使用时于冰上融化即可。 实验条件优化:由于不同转录因子与DNA之间结合的强度不同,在试验中要对重组蛋白用量、探针浓度以及缓冲液配方等因素进行摸索,以确定最佳实验体系。 尼龙膜处理:紫外交联后的尼龙膜可在室温条件下放置数天,注意在封闭之前勿再次吸湿。 器具清洁:在操作过程中确保所用器具洁净,避免SDS或其它杂质污染。 通过以上步骤,你可以更准确地分析EMSA实验数据,从而得出更可靠的结论。
如何快速发表文章?研究生必看! ✅ 一入研究生的大门,就赶紧去实验室吧!早点上手,培养细胞、提取质粒、跑电泳、做Western,练好基本功,了解导师的研究方向,选择你感兴趣的小方向。就像“熟读唐诗300首,不会做诗也会吟”,趁着有空,赶紧看文献吧。 ✅ 实验平台非常重要,重要的事情说三遍!好的实验平台是什么?有水平的导师和良好的科研氛围,有好的动物实验室,有大量的基础实验工具,有先进的实验方法以及一脉相传的实验经验,当然齐全的仪器设备也不能少。好的实验室能帮你节省大量时间,让你有更多时间去创新。在你实验遇到问题时,有水平的导师能及时帮你找到失败原因。比如你想验证NFKB的活性,实验室有NFKB相关质粒,师兄师姐有做EMSA的经验,实验分分钟搞定,结果还特漂亮。若没有,你得写邮件求质粒或自己构建,费时费力。那么你选对平台了吗? ✅ 开始实验时不要把鸡蛋放在一个篮筐里,研究两个小方向,两手都要硬,根据研究进展再调整侧重。 ✅ 奋斗!奋斗!奋斗!要想尽快出文章,8小时工作制就是奢侈品! ✅ 青年研究学者(有基金,但有大量教学、医疗工作)没时间、没学生怎么办?生物公司现在如雨后春笋,既然当小Boss了,有些东西就花钱吧,如包装病毒,雇人做些基础实验,外包实验(不过要找个靠谱的,现在审计严格着呢!)。
EMSA实验探针设计八大原则,你知道吗? EMSA实验中,探针设计至关重要,以下是探针设计的八大原则: 序列选择 슩择包含目标结合位点的DNA或RNA序列作为探针,这是实验成功的关键。 结合位点 确定目标蛋白质的结合位点核心序列,有助于准确识别和定量结合反应。 互补性 探针序列应与目标结合位点互补,形成稳定的双链结构,确保实验准确性。 标记方式 常见的标记方式包括放射性同位素标记、荧光标记、生物素标记等,选择适合的标记方式可以提高实验灵敏度。 长度和纯度 探针长度不宜过长,以免增加结合复杂性;同时,确保探针的纯度,避免杂质干扰结合反应。 负对照 늨𘀤𘪤𘎧结合位点不相似的负对照探针,验证特异性结合,确保实验结果的特异性。 敏感性和稳定性 犩过优化探针浓度、反应条件和电泳条件,确保实验结果的准确性和可重复性。 遵循这些原则,你的EMSA实验将更加精确和可靠!
互作机制研究方案 CoIP-Mass⠠⠠⠠⠠( IgG-IP vs Ab-IP ) CoIP-WB⠠⠠⠠⠠⠠⠯1个候选蛋白检测) Pulldown-Mass⠠⠯对照和目的蛋白 ) Pulldown-WB⠠⠠⠯1个候选蛋白检测 ) HuProt蛋白组芯片检测⠠⠠⠯20K+蛋白互作检测) RIP-seq⠠⠠⠠⠯Input vs Ab-IP ) RIP-qPCR⠠⠯1个候选RNA检测 ) ChIP-Seq⠠⠠⠯Input vs Ab-IP ) ChIP-qPCR⠠( 1个候选DNA检测 ) EMSA⠠⠠⠠⠠⠠⠯蛋白和DNA检测 ) ChIRP-Mass ( Target vs LacZ Probe ) ChIRP-Seq⠠⠯Target vs LacZ Probe ) 以上如有相关问题,欢迎来询。 #科研#⠣实验外包#⠣研究生#
EMSA凝胶迁移实验全攻略✨ 探索EMSA凝胶迁移实验的奥秘,这里有一份详尽的实验笔记等你来发掘! 報. GST/His-a融合蛋白的纯化步骤: 在新鲜制备的裂解液上清中加入适量体积的磁珠,4℃摇床上缓慢摇动30~60 min。 4℃,4000 rpm离心5 min,弃去上清,磁珠上结合了GST/His-a融合蛋白。 加入500 预冷的PBS溶液,轻晃悬浮珠子,4℃,4000 rpm离心5 min,弃去上清,重复此步骤3次。 最后一次用移液枪吸走珠子表面的液体,但注意不要吸走珠子,即可获得结合GST/His-a的磁珠。 젲. 探针的标记: 使用生物素标记EMSA探针。 3. EMSA结合反应: 根据实验需求进行EMSA结合反应。 破. EMSA胶的配制以及电泳: 制备4-6%非变性聚丙烯酰胺凝胶。 加样前先在0.5X TBE buffer中80V预电泳10 min,预电泳完毕后冲洗加样孔。 混合样本及电泳缓冲液,点样电泳。 恒压80V进行电泳,直至缓冲液指示带距离凝胶底部2~3 cm为止(大约50-60 min,根据实际情况调整电泳时间及电压;电泳时间不宜过长,温度不能超过30℃)。 5. 转膜: 在预冷的0.5XTBE中浸泡凝胶,尼龙膜(至少提前10 min 侵泡),滤纸和纤维垫。 按顺序组装“三明治”:纤维垫,滤纸,凝胶,膜,滤纸,纤维垫。注意电极,确保凝胶位于阴极、膜位于阳极。 在预冷的0.5XTBE中进行转膜。转膜装置应置于冰上或者低温室中,恒流250mA转膜1h(注意根据实际情况调整电流及时间)。 转膜完毕后,小心取出尼龙膜,样品面向上,放置在一干燥的滤纸上,轻轻吸掉下表面明显的液体。立即进入下一步的交联步骤,不可使膜干燥。 6. 交联: 紫外交联:转完后的膜,放入方皿中,在紫外灯下交联3-10 min(具体时间根据实际调整)。 ᠷ. 化学发光法检测生物素标记的探针: 室温封闭15 min。 加入适量的Streptavidin-HRP Conjugate,室温孵育15 min。 洗涤3次,每次5 min。 按1:1的比例将ECL发光液均匀滴到膜上。 曝光,显影,定影。 下回我们将分享EMSA实验结果分析,敬请期待!
쎆-KB p65活性检测大揭秘 즠𘨽쥽因子NF-kappaB(NF-kB)可是个大家伙,它参与调控炎症、抗凋亡、肿瘤形成等好多重要过程呢!其中,p65(RelA)这个亚基可是个关键角色。 知道吗?p65和其他几个亚基,比如p50、p49(也被称为p52)、p75(c-Rel)和p68(RelB),一起构成了NF-kB的大家庭。它们有的起反式激活作用,有的则具有DNA结合活力。 检测NF-KB p65的活性,其实就是要看看这个亚基是否在细胞核中活跃地与DNA结合。我们可以通过一系列复杂的实验,比如凝胶迁移实验,来观察这一过程。 在凝胶迁移实验中,我们会用到纯化的蛋白或者细胞核抽提物,然后在特定的条件下,让NF-kB与DNA结合。如果p65活性高,那么就会形成特定的凝胶迁移复合物,我们就可以通过电泳和染色来检测到它。 最后,我们还可以利用不同形式的NF-KB p65抗体,来捕获细胞核蛋白并加以区分。通过酶标仪450nm处的吸光度值测定,我们可以定量比较目的蛋白的活化度,从而得出一个明确的结论。 这样,我们就可以轻松地检测出NF-KB p65的活性啦!是不是感觉很有趣呢?快来试试吧!
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