封闭液最新娱乐体验_wb可以封闭过夜么(2024年12月深度解析)
原位杂交实验全攻略:从准备到显色 ꠥꌥ准备 在进行原位杂交实验之前,你需要准备一系列试剂和耗材。试剂包括2㗣0.5㗣0.2㗧SSC缓冲液、DAB试剂盒和原位杂交试剂盒(包含蛋白酶K、预杂交液、杂交液、封闭液、兔抗地高辛抗体、HRP-山羊抗兔IgG)。仪器和耗材则有赛默飞F1单道移液器、QSP盒装吸头、湿盒、切片缸、温箱、硅化盖玻片等。 젦 𗥓玻片制备 首先,你需要制备细胞涂片。将2-3滴PBS重悬的细胞液滴在涂有多聚赖氨酸的载玻片上,然后在培养箱中干燥5分钟。 🠦交前处理 接下来,进行杂交前处理。滴加1/mL的蛋白酶K稀释液,37Ⰳ下细胞通透30分钟,然后用0.1mol/L的甘氨酸溶液终止消化。 预杂交 用吸水纸轻轻吸去多余的液体,滴加20的预杂交液,盖上硅化盖玻片,37Ⰳ湿盒孵育30分钟。然后用0.2㗓SC缓冲液室温洗3次,每次洗涤5分钟。 杂交 擦去周围多余的液体,滴加20的杂交液,盖上硅化盖玻片,将切片置于90Ⰳ环境下孵育10分钟。接着将切片置于盛有2㗓SC缓冲液的湿盒中,37Ⰳ孵育过夜。 杂交后处理 轻轻揭去盖玻片,42Ⰳ预热的2㗓SC缓冲液洗2次,每次5分钟;37Ⰳ预热的0.5㗓SC缓冲液洗1次,每次15分钟;0.2㗓SC缓冲液洗1次,每次15分钟。然后滴加封闭液37Ⰳ孵育30分钟,去除多余的液体。接着滴加兔抗地高辛IgG,湿盒37Ⰳ孵育30分钟。轻轻去除多余的液体,浸泡在PBS中5分钟。最后滴加HRP-山羊抗兔IgG,将切片放入湿盒中37Ⰳ孵育30分钟。 蠦𒊥䥤余的液体,滴加新鲜的DAB工作液显色20分钟,用蒸馏水终止显色。最后在显微镜下观察结果。 结果分析 经过DAB染色后,实验组阳性信号呈棕黄色,位于胞浆中。
细胞培养与免疫荧光染色全攻略 一、细胞接种 슥覗 菌条件下,打开Slide I biTreat的包装,并将其放在Slide滑架上。 使用移液枪向通道中加入100 3㗱0^5 cells/mL Rat1细胞悬液。 用提供的盖子轻轻盖住储液池,但不要完全密闭。 将滑架放入培养箱中培养(37℃;5% CO2)60分钟,使细胞贴壁。然后向两个储液池中每池加入0.5 mL的无细胞培养基。 孵育过夜。 二、细胞固定 犤觧ꥐ𘥎覶 中的全部培养基。 用1 mL杜氏磷酸盐缓冲液缓慢加入一个空储液池中,并从另一个储液池中吸出,不要一次性吸去整个通道中的液体。 用同样的方法加入约200 的3.7%多聚甲醛(用磷酸盐缓冲液配制)以固定细胞。从通道的另一侧吸去储液池中的内容物,等待10分钟。 三、破膜与封闭 按照步骤5所述,用1 mL磷酸盐缓冲液再次洗涤细胞。 用约200 0.1% Triton X-100破膜液(用磷酸盐缓冲液配制)处理细胞3-5分钟。 用磷酸盐缓冲液洗涤细胞。 用约200 1% BSA封闭液(用磷酸盐缓冲液配制)处理细胞20分钟。 用适量磷酸盐缓冲液洗涤细胞。 四、染色与封片 芥𘥎道中的所有液体,不要使通道干燥。 使用100 Alexa Fluor 488鬼笔环肽(1 U鬼笔环肽+ 500 磷酸盐缓冲液+1% BSA封闭液,购自Invitrogen公司)并在室温下培养20分钟。 用磷酸盐缓冲液洗涤细胞并清空通道。 使用100 DAPI(0.1 /mL,购自Sigma-Aldrich公司)染色3-5分钟。 用磷酸盐缓冲液洗涤细胞,并去除所有液体。使用滴管瓶在储液池中注入100 ibidi封片剂。用随附的盖子密闭储液池。 在荧光显微镜下用适当的滤光片组观察细胞。
WB实验全攻略:从电泳到曝光 SDS-PAGE 电泳 上样:首先,用斜插板固定玻璃板,确保底部对齐,避免漏胶。将分离胶灌到适当的高度,可以用梳子测试一下,梳子齿距离分离胶上液面大约7mm为宜。然后用异丙醇或蒸馏水封胶,静置30分钟。接着,将浓缩胶缓慢均匀地加入到分离胶上层,直至加满,加上梳子,20分钟后待分离胶凝固。向电泳槽中加入电泳缓冲液,使两块玻璃内侧电泳液高于上样孔,外侧电泳槽内电泳液浸没凝胶底部,玻璃板内侧液面高于外侧。然后开始上样,每孔总上样量在20 以内,上样时间要短,避免样品扩散。 转膜 转膜的摆放顺序为:阴极碳板+海绵+三层滤纸+胶+膜+三层滤纸+海绵+阳极碳板。将电泳完毕的凝胶放入转膜缓冲液中,采用“三明治”模式,打开电转印夹,每侧垫上一块专用的转膜液浸透过的海绵垫,再各放一块滤纸,凝胶平稳地放在阴极滤纸上。然后将已经用甲醇激活过的PVDF膜放在凝胶的上方,去除气泡,夹好夹子,将转印夹放入转印槽中。 ꠥ抗体孵育 将转印完的膜放入装有 PBST 的孵育槽中,快速漂洗一次,然后加上脱脂牛奶,放置脱色摇床上,室温下封闭 60 分钟。按照抗体说明书,进行一抗稀释,配置好后,倒掉孵育槽中的封闭液,加入配置好的一抗,4℃孵育摇床过夜(摇床慢摇)。回收一抗,用 PBST 快速洗膜三次,然后加入 PBST,放置脱色摇床上快速洗脱,每次 10 分钟,洗三次。将二抗用 PBST 按照 1:5000 的比例进行稀释,然后加入孵育槽中,放置摇床上慢摇,室温下孵育60分钟。PBST 快速洗膜三次,然后再加入 PBST,放置脱色摇床上快速洗脱,每次 10 分钟,洗三次。 𘠦光 根据条带深浅调整曝光时间。 实验参数 制胶体系:分离胶A液2.5 mL+分离胶B液2.5 mL;浓缩胶A液1 mL+浓缩胶B液1 mL;50 AP 电泳配方:SDS 1g+Glycine 18.77g+Tris 3.03g+纯水1000 mL 转膜配方:Glycine 14.42g+Tris 3.03g+甲醇 150mL+纯水 850mL 电泳条件:上层胶(浓缩胶)30分钟,下层胶(分离胶)1小时 转膜条件:30分钟(快速转膜液) 封闭时间:1小时 封闭后洗膜时间:10分钟㗳 一抗浓度:说明书 一抗后洗膜时间:10分钟㗳 二抗浓度:说明书 二抗后洗膜时间:10分钟㗳
WB实验常见问题及原因总结 转膜不充分 膜未完全湿透:使用100%甲醇浸透膜。 靶蛋白分子量小:选择小孔径膜,缩短转移时间。 靶蛋白等电点接近缓冲液pH:尝试使用CAPS缓冲液(pH 10.5)或低pH缓冲液如乙酸缓冲液。 甲醇浓度过高:降低甲醇浓度,或使用乙醇或异丙醇代替。 转移时间不足:对于厚胶和高分子量蛋白,延长转移时间。 背景高 膜未完全湿透:使用100%甲醇浸透膜。 洗膜不充分:增加洗液体积和洗涤次数。 阻断不充分:增加封闭液孵育时间,提高温度,选择合适的封闭试剂(脱脂奶粉、BSA、酪蛋白等)。 二抗浓度过高:降低二抗浓度。 膜干燥:保证充分的反应液,避免干膜现象。 曝光过度:缩短曝光时间。 抗体与阻断蛋白交叉反应:检测抗体与阻断蛋白的交叉反应性,选择无交叉反应的封闭剂。洗涤液中加入Tween-20可减少交叉反应。 렦阳性条带 抗体染色不充分:增加抗体浓度,延长孵育时间。 酶失活:直接将酶和底物混合,如果不显色则说明酶失活。选择在有效期内、有活性的酶联物。 标本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低:设置阳性对照,如果阳性对照有结果,但标本没有,则可能是标本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低。可考虑增加标本上样量。 试剂不匹配:一抗与组织种属、一抗与二抗或底物与酶系统之间不匹配。通过设置内参照验证二级检测系统的有效性。 一抗失效:选择在有效期内抗体;现配现用工作液。 HRP抑制剂:所用溶液和容器中避免含有叠氮化钠。
Western Blot测p38秘籍 最近做了一次Western Blot,检测到了p38,分享一下经验供大家参考。 🠦体选择:使用的是Abcam的抗体,具体货号在图3和图4中。 🠧𛆨蛋白提取:用RIPA裂解液(200ul/孔,6孔板)提取细胞蛋白。 🠧᤻转膜前,加入预染蛋白煮15分钟。上样量40ug,使用雅酶预制胶10%(PAGE)进行电泳,先以80V跑30分钟,再以100V跑40分钟。Marker使用的是雅酶的。 🠨操作:在冰浴中,以230mA电流转膜90分钟,确保电压保持在130V以下。 🠥程:使用碧云天QuickBlock™ Western封闭液(货号P0252),封闭30分钟。 🠤𘀦孵育:一抗pp38和p38均按1:1000的比例用雅酶的一抗稀释液稀释,放在4度冰箱摇床上过夜。蛋白显影在41kDa左右。 希望这些信息对大家有所帮助!
WB实验全攻略:从电泳到曝光 ### SDS-PAGE 电泳 上样准备:首先,用斜插板固定玻璃板,确保底部对齐,避免漏胶。然后,将分离胶灌到适当的高度,可以用梳子测试一下,梳子齿距离分离胶上液面大约7mm为宜。接着,用异丙醇或蒸馏水封胶,静置30分钟。之后,缓慢均匀地加入浓缩胶,直至加满,再加上梳子,等待20分钟后分离胶凝固。电泳槽中加入电泳缓冲液,使两块玻璃内侧电泳液高于上样孔,外侧电泳槽内电泳液浸没凝胶底部,玻璃板内侧液面高于外侧。开始上样,每孔总上样量在20 以内,上样时间要短,避免样品扩散。 转膜 转膜摆放顺序为:阴极碳板+海绵+三层滤纸+胶+膜+三层滤纸+海绵+阳极碳板。将电泳完毕的凝胶取出,放入转膜缓冲液中。采用“三明治”模式,打开电转印夹,每侧垫上一块专用的转膜液浸透过的海绵垫,再各放一块滤纸,凝胶平稳地放在阴极滤纸上。接着,将已经用甲醇激活过的PVDF膜放在凝胶的上方,去除气泡,夹好夹子,将转印夹放入转印槽中。 封闭与抗体孵育 ꊥ的膜放入装有PBST的孵育槽中,快速漂洗一次,然后加入脱脂牛奶,放置脱色摇床上,室温下封闭60分钟。 按照抗体说明书,进行一抗稀释,配置好后,倒掉孵育槽中的封闭液,加入配置好的一抗,4℃孵育摇床过夜(摇床慢摇)。 回收一抗,用PBST快速洗膜三次,然后加入PBST,放置脱色摇床上快速洗脱,每次10分钟,洗三次。 将二抗用PBST按照1:5000的比例进行稀释,然后加入孵育槽中,放置摇床上慢摇,室温下孵育60分钟。 PBST快速洗膜三次,然后再加入PBST,放置脱色摇床上快速洗脱,每次10分钟,洗三次。 曝光 𘊦 榷𑦵 调整曝光时间。 通过以上步骤,你就能完成一次完整的WB实验啦!希望这篇攻略能帮到你。
WB实验迷茫?看这篇就够! 1⃣️ 如何避免胶跑得不漂亮? 配胶:清洗玻璃板并检查是否漏气,避免胶凝固不均匀。倒胶时要充分混合并去除气泡。双蒸水或乙醇隔离时,缓慢加入,避免稀释分离胶。 平衡:将配置好的胶放入点泳池,室温放置10分钟,待胶与电泳液温度一致再进行电泳。 上样:拔出上样梳时要保持水平,避免上样孔倾斜。在样品两侧增加等体积的空白1x loading buffer孔,避免两侧样品条带扩宽。 电泳:小电压能使胶的分子筛效应更好。电压越小,条带越漂亮。浓缩胶55V,分离胶75V电泳效果最佳,但时间长。 2⃣️ 电泳中常见现象: “︶” 条带呈笑脸状 “︵” 条带呈皱眉状 条带拖尾 纹理(纵向条纹) 条带偏斜 条带两边扩散 3⃣️ 如何降低WB背景? 膜封闭不够:建议延长封闭时间,选择合适的封闭液。 一抗稀释度不适宜:太高时选择最适宜的抗体稀释度。 一抗孵育温度偏高:建议4℃过夜孵育。 膜选择不当:NC膜的背景通常比PVDF膜低,但吸附力稍差。 膜干燥或反复接触:实验过程中要保持膜的湿润,使用镊子夹取膜。 曝光时间过长:可减少曝光时间。 4⃣️ 如何减少杂带? 目的蛋白存在多个修饰位点。 目的蛋白有其他剪切本。 样本处理过程中目的蛋白发生降解(最常见)。 上样量过高:适当减少上样量。 5⃣️ 如何解决无信号或信号弱的问题? 目标蛋白未提取出来:选用合适的裂解液。 目标蛋白表达低:增加上样量。 转移不完全或过转移:适当调整转膜的时间和电流。 抗体不能识别测试种属的相关蛋白。 一抗孵育时间不足:建议4℃结合过夜。 二抗与一抗不匹配:选择针对一抗来源的种属的抗体。 洗膜过度:缩短洗膜时间。 6⃣️ 其它现象: 膜上多处出现黑点或黑斑:抗体与封闭试剂发生非特异性结合,或奶粉未充分溶解粘在膜上。 反白(条带显白色):目的蛋白含量太高或一抗浓度偏高。 蛋白分子量偏低或偏高:胶浓度不适合,高分子量要用低浓度胶;小分子蛋白要用高浓度胶。
WB封闭揭秘:原理作用 在Western Blot(WB)实验中,封闭步骤至关重要,它旨在防止抗体非特异性结合到膜上的非目标蛋白或其他分子,从而减少背景干扰,提高实验的特异性和灵敏度。 封闭的原理 在WB过程中,蛋白质通过电泳分离后被转移到硝酸纤维素(NC)、聚偏氟乙烯(PVDF)或其他适用膜上。这些膜具有高蛋白结合能力,但也意味着它们可以结合任何可用的蛋白,包括用于检测的抗体。如果不进行封闭处理,抗体可能会非特异性地结合到膜上未被样品蛋白占据的位置,导致高背景信号。 砥的类型 封闭液通常包含一种或多种非特异性蛋白或其他大分子,它们可以占据这些潜在的非特异结合位点。常用的封闭剂包括: 牛血清白蛋白(BSA):一种纯净的蛋白,常用于更严格的应用,如磷酸化蛋白的检测。 脱脂牛奶:最常用的封闭剂,因成本低廉且富含多种蛋白而广泛使用,但对某些实验(如磷酸化检测)可能引入干扰。 非脂蛋白:如鱼胶原或其他商业可用的植物蛋白基封闭剂,适合避免动物源性污染。 封闭的作用 减少非特异性背景:封闭剂通过占据空白位点,阻止抗体非特异性结合,从而降低背景噪音,使条带更清晰。 增强特异性信号:有效的封闭可以帮助抗体更专一地结合到其目标蛋白,提高检测的特异性。 封闭的操作 通常,在膜转移后,将膜浸入封闭液中,在室温或4Ⰳ下孵育一段时间(通常是室温1小时或4℃过夜)。封闭的时间和温度可以根据实验需要和实验室的具体协议进行调整。
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