尼氏染色最新视觉报道_尼氏染色结果怎么看(2024年11月全程跟踪)
病理切片染色技术服务全解析 病理染色在医学诊断中扮演着至关重要的角色。通过染色,医生可以观察到细胞和组织的微观结构,从而诊断出各种疾病。不同的染色方法可以揭示组织中的不同成分,以下是部分常见的病理染色方法: HE染色 Masson染色 PAS染色 阿利新蓝染色 AB-PAS染色 天狼猩红染色 甲苯胺蓝染色 尼氏染色 肥大细胞染色 油红O染色 番红固绿染色(骨组织) LFB髓鞘染色 茜素红染色 EVG染色 Trap破骨细胞染色 抗酸染色 ALP碱性磷酸酶染色 瑞士姬姆萨染色 Von Kossa染色 高尔基染色(全景扫描) 普鲁士蓝染色 DAB加强法普鲁士蓝染色 苯胺蓝染色 黑色素染色 网状纤维染色 刚果红染色 Glodner三色法染色 维多利亚蓝染色 乳糖苷酶染色 ATP染色 甘氨酸银染色(镀银) 通过这些染色方法,医生可以更准确地诊断疾病,制定治疗方案。
尼氏染色法:探索神经元的秘密 尼氏染色法(Nissl Staining)是一种用碱性染料染色神经组织的方法。尼氏体是神经元胞质内的一种嗜碱性物质,广泛存在于各种神经元中,不同神经元中的尼氏体形状、大小和数量都有所不同。通过尼氏染色,可以观察到神经元内的细胞结构,并了解神经元的损伤情况。 用于尼氏染色的碱性染料主要有焦油紫、亚甲蓝、甲苯胺蓝和硫堇等。以下是使用甲苯胺蓝染料对小鼠脑组织进行尼氏染色的步骤: 将新鲜组织固定在10%中性福尔马林溶液中48小时后,进行常规脱水包埋。 切片厚度为6-8,常规脱蜡至水。 用蒸馏水冲洗切片。 将切片放入Toluidine blue Stain中,将染色缸置于恒温箱50-60Ⰳ侵染25-50分钟。 用蒸馏水稍冲洗切片。 用70%乙醇冲洗切片。 用95%乙醇迅速分化,分化不易控制,如果分化失败,可重复步骤4。 用无水乙醇迅速脱水。 用二甲苯透明,中性树胶封固。 在显微镜下观察并拍照。 通过这些步骤,可以观察到神经元内的尼氏体,从而了解神经元的结构和损伤情况。
阿尔茨海默病大鼠模型构建及药物研发全攻略 ꌥ觉餸分组 实验选用SPF级SD大鼠,健康雄性,体重在250g-300g之间。实验分为六组:正常对照组、模型组、阳性药组和三个不同剂量的受试药组。 젥ꌥ覜 实验周期为4-6周。 建模方法 采用1%戊巴比妥钠40/g腹腔内注射麻醉SD大鼠,麻醉后固定于脑立体定位仪上。根据大鼠脑立体定位图谱,以前囟为零起点,前囟后3.5mm处为穿刺点,中线右侧旁开2mm,用牙科钻钻开颅骨。采用微量注射器自脑表面垂直进针3mm,即(AP= -3.5 mm, ML=2.0 mm, DV=3.0 mm),双侧海马CA1区缓慢匀速注射A-40各10 (1),留针5分钟后退针并缝合伤口。造模后3天,开始尾静脉注射生理盐水,每只大鼠给药100/次/d,连续给药21天后进行水迷宫行为学检测。 行为学检测 所有组别在给药后21天进行Morris水迷宫试验,分为定位航行实验和空间探索实验。 定位航行实验:大鼠连续接受5天训练,每天4次,每次间隔30分钟,记录大鼠从4个入水点和入水并找到平台所需的时间,即逃避潜伏期。4次潜伏期的平均成绩作为当日的最终结果。 空间探索实验:实验第6天,撤去平台,从距离平台最远端入水后将大鼠放入水中,记录30秒内大鼠的游泳轨迹,观察分析大鼠在目标象限的停留时间及穿越平台的次数。 젧𛇧 理学 行为学结束后,将各组大鼠摘取全脑,冰上剥去小脑,将剩余部分左右对切,一半放入4%多聚甲醛中固定,用于病理学检测。另一半取海马用于PCR和蛋白检测。 尼氏染色:海马组织固定后石蜡切片,进行尼氏染色,观察海马区神经细胞形态和数量。光学显微镜下计数视野下每组大鼠同一部位的神经元数量,作统计分析。 免疫荧光染色:观察海马区A-40染色情况。荧光显微镜下计数视野下每组大鼠同一部位的阳性斑块数量,作统计分析。 TUNEL染色:观察神经元凋亡情况。荧学显微镜下计数视野下每组大鼠同一部位的阳性染色数量,作统计分析。 Western-blot检测:收集海马组织蛋白,检测active-caspase-3,Bcl-2和Bax的蛋白表达。 通过以上方法,可以评估阿尔茨海默病大鼠模型的行为学表现和病理学变化,为药物研发提供有力支持。
尼氏染色:显示神经组织结构的神奇方法 尼氏染色(Nisslstaining)是一种专门用于染色神经组织的方法,它能够清晰地显示细胞核和胞质的细微结构。以下是进行尼氏染色的详细步骤: 首先,取一块脱脂石蜡包埋的组织切片,将其放入蒸馏水中漂洗几秒钟,以去除蜡质。 接下来,将切片转移到尼氏染色液中,浸泡10-20分钟。尼氏染色液的成分通常包括碱性染料(如甲苯胺蓝)和酸性染料(如酸性品红)。通常使用0.1-0.5%的甲苯胺蓝染料溶液,可以将甲苯胺蓝溶解在蒸馏水中制备。酸性品红染料溶液的浓度也通常在0.1-0.5%之间。 染色完成后,将切片转移到蒸馏水中漂洗几秒钟,以去除多余的染料。 然后,将切片转移到70%乙醇中,浸泡1-2分钟。 接着,将切片转移到95%乙醇中,再次浸泡1-2分钟。 之后,将切片转移到绝对乙醇中,浸泡1-2分钟。 为了使组织透明,将切片转移到透明剂中(如二甲苯),浸泡数分钟。常用的透明剂包括二甲苯、苯酚和酮。透明剂的用量和浸泡时间可以根据实验需求进行调整,通常为浸泡数分钟至数小时。 为了确保组织彻底透明,再次将切片转移到透明剂中浸泡数分钟。 最后,将切片转移到玻片上,用透明胶封闭。 通过尼氏染色,神经细胞的细胞核会呈现深蓝色,而胞质则会呈现粉红色。这种方法有助于研究者观察和分析神经组织的细胞形态和组织结构。
襌槔笔记:组织胚胎学红蓝铅笔绘图分享 医学生笔记:组织胚胎学红蓝铅笔绘图分享 蠥䍥𑂦平上皮:整膜后的皇底细月包为失容桂状,再上几层,多田用胞图渐度平星横状。佩层扁平上皮整底房态 伏不平,外居比较平整。特征:由的急细月包组成,表层细胞是扁平蹒片状,重直切面上,细胞形状不一。 蠧松结缔组织:染色:复红色。肥大细胞、成纤维细胞、巨噬细胞、弹性纤维等。 蠩🩪詪襹体模式图:内环骨、骨内膜、骨单位、润骨板、骨外膜、中央馆、快馆、外环骨、骨单位骨板、穿通管等。 蠨ဧ𛆨仿真图:粒细胞、嗜酸性粒细胞、中性粒细胞、单核细胞、淋巴细胞、血小板、红细胞等。 蠩ꨩ꼨:纵切面展示肌核和肌纤维。 蠨🐥觥经元模式图:尼氏体、细胞核、轴突、郎飞结等。 蠤𘭥訄光镜图:单层内膜、外膜、外弹性膜等。 蠦𗋥𗴥 的小淋巴细胞。 蠧𖨅镜图:HE染色,400㗦篼毛细血、滤泡上皮细胞、滤泡间质细胞等。 蠨底与胃体立体模式图:胃底与胃体部立体结构,包括胃小凹、胃黏膜等。 蠨上皮与胃底腺立体模式图:胃小凹、表黏液细胞、颈液细胞、主细胞等。 蠨小叶光镜图:HE染色,肝板、肝细胞、中央静脉等。 蠨訿𗨷ﯼ曲小管、远曲小管、入球微动脉等。 蠨᥅镜图:肺泡细胞、肺泡管、肺泡囊等。 蠧精小管局部光镜图:支持细胞、来精子多细胞、精子等。
医学生手绘笔记大揭秘 芰 2024年2月27日 结构名称: 肾单位 蠦色: HE 倍数: 40x 绘图成绩: 2024年8月20日 结构名称: 肌膜、肌内膜、肌外膜 蠦色: HE 倍数: 10x 绘图成绩: 2024年5月22日 结构名称: 小叶间静脉 蠦色: 倍数: 10x 绘图成绩: 2024年10月4日 结构名称: 树突、尼氏体、边缘细胞 蠦色: HE 倍数: 10x 绘图成绩: 2024年8月5日 结构名称: 张液性池、液性泡、混合性泡 蠦色: E色 倍数: 10x 绘图成绩: 2024年8月15日 结构名称: 支持细胞、精原细胞、精样细胞、精子细胞、级精母细胞、丸间版细胞、黑丸 蠦色: HE 倍数: 40x 绘图成绩:
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