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液体培养基前沿信息_培养基的五个步骤(2024年12月实时热点)

内容来源:麦吉窗影视所属栏目:教程更新日期:2024-11-28

液体培养基

测MIC秘籍!轻松搞定 𐟧젦 𗥓溶解 首先,将样品用液体培养基配置成1024/mL或1024mg/mL。如果称量不便,可以选择配置成10240/10mL或10240mg/10mL。如果样品不溶于液体培养基,可以先用有机溶剂溶解,然后再用培养基定容。 𐟔젦“作过程 在96孔板的ABC三行中,每个蜂窝孔中加入100液体培养基。 在A1、B1、C1中各加入100样品,相当于三个平行。 用100量程的排枪在A1、B1、C1中反复吹吸混匀。 从混匀的A1、B1、C1中吸100混合液至A2、B2、C2中吹吸混匀,再从A2、B2、C2中吸100至A3、B3、C3中吹吸混匀,依次2倍梯度稀释至A12、B12、C12后,从A12、B12、C12中吸100弃去。 在A、B、C三行所有孔中加入100 1.0x10^6 CFU/mL的菌悬液并吹吸混匀。同时设置阴性对照(100培养基+100菌液)和阳性对照(100抗生素+100菌液)。 将96孔板放入37℃培养箱中培养16-20小时。 𐟓Š 判定结果 根据加菌液后的样品浓度计算MIC。肉眼观察浊度变化,或用酶标仪测定OD600变化。一般以OD600变化<0.05为判定结果。 𐟓Œ 注意事项 96孔板最外一圈可以选择不用。 通过以上步骤,你就可以轻松测定最小抑菌浓度(MIC)啦!

2216E琼脂培养基制备全攻略 2216E琼脂培养基是一种专为海生细菌培养和计数设计的培养基。以下是详细的制备步骤和注意事项: 培养基配方(固体) 蛋白胨:5克 酵母膏:1克 磷酸高铁:0.01克 琼脂:15-20克 陈海水:1000毫升 培养基配制步骤 配料 根据配方换算,在容器中加入少量水(蒸馏水或自来水)。 按照配方称取各种药品,依次加入。 加足所需水量(一药一勺,取药后立即盖上瓶盖)。 溶解 淀粉溶解:少量冷水调成糊状。 加热溶解,特别是含有琼脂的培养基,一定要煮沸。琼脂的熔解温度为95-97℃,需要边加热边搅拌以防止烧焦。 调pH 用煮沸的5%氢氧化钠溶液调节pH至7.6Ɒ.2,25℃。 过滤 用滤纸或棉花进行过滤(有时可以省去)。 分装 一般培养基放在三角瓶或试管中灭菌使用。 三角瓶 静置培养:100ml培养基/250ml的三角瓶,最多不能超过150ml。 摇瓶培养:15-20ml培养基/250ml的三角瓶,保证通气良好。 试管分装 液体培养基一般装4-5ml,约试管的1/4高度。 固体斜面培养基一般装3-4ml,约试管的1/5高度。 包扎 分装好后,塞上棉塞,再用牛皮纸将棉塞包裹好,防止灭菌时水份进入把棉塞弄湿。 灭菌 置高压蒸气灭菌器中,在121℃(约105kPa)下灭菌20min。如果灭菌的温度太高,营养成分会被破坏,培养基中的糖、氨基酸会使培养基的颜色变深。 倒平板 将冷至50℃培养基分别倒入经灭菌的各平皿中,每平皿约15mL,待其冷却凝固,置2-8℃冰箱内保存备用。 注意事项 该培养基无机盐成分较多,在高温高压灭菌后容易产生沉淀。为了更好的倒平板,灭菌前的溶解很关键,先加入水,边搅拌边缓慢加入干粉,不要让干粉成团。倒平板之前,应充分摇匀,尽量让沉淀分散开来,避免聚集在一起影响计数。 通过以上步骤,您就可以成功制备2216E琼脂培养基,为海生细菌的培养和计数提供良好的环境。

超净工作台紫外灯使用全攻略 𐟌Ÿ 菌落PCR与摇菌全流程 1️⃣ 准备工作 打开超净工作台,启动紫外灯进行灭菌20~30分钟。 将枪头、酒精灯、离心管等放入超净工作台,确保无菌环境。 2️⃣ 配制PCR预混液 根据所需菌落数量,计算并配制PCR体系。 例如,若要验证16个菌,可先配制20ul体系,再分装至八联管中。 3️⃣ 挑取菌落 用10ul枪头轻轻沾取菌落,注意不要沾太多。 将沾有菌落的枪头放入PCR预混液中,反复吹打后弃去枪头。 4️⃣ PCR反应 将混合好的PCR液体放入PCR仪中进行反应。 反应完成后,进行跑胶验证条带大小是否正确。 5️⃣ 摇菌流程 将离心管架、50ml离心管、液体培养基LB、枪头等放入超净工作台,再次进行紫外消毒。 根据挑菌数量,摆放相应的50ml离心管,并加入5-10ml LB和对应抗生素。 打开培养皿,挑选PCR正确的菌落,用白色枪头挑菌,放入离心管中反复吹打后弃去枪头。 将离心管放入摇床继续培养,第二天可进行保菌、提质粒或送测。 𐟌Ÿ 超净工作台操作注意事项 所有操作均在超净工作台中进行,确保无菌环境。 使用紫外灯时,注意安全,避免直视灯光。 操作过程中,保持手部稳定,避免污染。

口罩微生物检测全攻略:从基础到实践 口罩在我们的日常生活和医疗环境中扮演着重要角色,特别是在新冠肺炎疫情全球蔓延的背景下,佩戴口罩已成为预防传染的关键措施。市面上的口罩种类繁多,按用途可分为工业用、医用和民用三种。口罩的质量检验至关重要,其中微生物检验是确保使用者健康的关键指标。本文将介绍口罩微生物检测的相关方法、培养基以及结果判断。 𐟔젥䧨‚ 菌群检测 流程:见图1。 结果报告:若乳糖胆盐发管产酸产气,乳糖发酵管产酸产气,且在伊红美蓝平板上有典型大肠菌落,革兰氏染色为阴性无芽胞杆菌,则可报告被检样品检出大肠杆菌。 𐟒š 绿脓杆菌检测 流程:见图2。 结果报告:若被检样品经增菌分离培养后,证实为革兰氏阴性杆菌,氧化酶及绿脓杆菌试验均为阳性,即可报告被检样品中检出绿脓杆菌。如绿脓菌素试验阴性而液化明胶、硝酸盐还原产气和42℃生长试验三者皆为阳性时,仍可报告被检样品中检出绿脓杆菌。 𐟍‡ 金黄色葡萄球菌检测 流程:见图3。 结果报告:若在琼脂平板上有可疑菌落生长,镜检为革兰氏阳性葡萄球菌,并能发酵甘露醇产酸,血浆凝固酶试验阳性者,可报告被检样品检出金黄色葡萄球菌。 𐟒‰ 溶血性链球菌检测 流程:见图4。 结果报告:若镜检革兰氏阳性链状排列球菌,血平板上呈现溶血圈,链激酶和杆菌肽试验阳性,可报告被检样品检出溶血性链球菌。 𐟌𑠧œŸ菌菌落总数检测 流程:见图5。 结果报告:按照以下算式计算: X2=B㗋/5 式中:X2----真菌菌落总数,CFU/g或CFU/mL B-----5块沙氏琼脂培养基平板上的真菌菌落总数 K-----稀释度 当菌落数在100以内,按照实有数报告,大于100时采用二位有效数字。如果样品菌落总数超过标准规定,则进行复检。 𐟌🠧œŸ菌定性检测 流程:见图6。 结果报告:若培养管混浊应转种沙氏琼脂培养基,证实有真菌生长,可报告被检样品检出真菌。 𐟧젤𘭥›𝨍聾𘲰20版1101无菌检查法 流程:见图7。 要求:接种供试品体积不大于培养基体积的10%,硫乙醇酸盐流体培养基(FTM)每管装量不少于15mL,胰酪大豆胨液体培养基(TSB)每管装量不少于10mL。 结果判定:阳性对照管应生长良好,阴性对照管不得有菌生长。供试品管若均无菌生长,判定供试品符合规定;若供试品管中任何一管有菌生长,判定供试品不符合规定。 通过这些检测方法和流程,可以有效确保口罩的质量和安全性,保障使用者的健康。

𐟧ꦊ‘菌圈实验:牛津杯法详解𐟥䊧‰›津杯法,也被称为管碟法,是一种利用双层琼脂进行抑菌圈实验的方法。虽然操作稍显复杂,但结果准确可靠。今天,我们将来介绍一种更简便的单层琼脂牛津杯法。𐟑‡ 首先,准备好菌悬液,浓度控制在1.0㗱0^7-8CFU/mL。你可以使用生理盐水、PBS或液体培养基进行稀释。接下来,在琼脂板背面做好标记,并用100的菌悬液均匀涂布于平板上。𐟧𞊊之后,将含菌平板放入框子中,便于后续操作。牛津杯经过灭菌并烘干后,用镊子轻轻放置在含菌平板上,并注入100-150的样品。同时,以溶解样品的溶剂作为空白对照。𐟥䊊最后,盖上培养皿盖子,并将框子置于37℃的恒温培养箱中培养16-20小时。培养结束后,用镊子取出牛津杯,倒置平板,采用十字交叉法测量抑菌圈的直径。𐟓 通过这种方法,你可以有效地评估样品的抑菌效果,为科研工作提供有力支持!𐟒ꀀ

化验员必学:鉴定类培养基的制备指南 𐟧ꊥ˜🯼Œ化验员们!今天我们来聊聊鉴定类培养基的制备方法。鉴定类培养基主要用于检验微生物的各种生化特性,很多分离类的培养基也具有鉴定效果,被称为分离鉴别培养基。这些培养基的形式多种多样,按状态可分为液体、固体、半固体。每种类型的培养基配制方法也不尽相同。 液体类鉴定培养基 𐟌Š 液体类培养基,比如糖发酵、MR-VP、氨基酸代谢试验等,通常需要分装到试管中。如果你需要观察产气现象,可以在试管中放入倒管。灭菌后要进行排气;如果是厌氧培养,可以在培养基上方覆盖约3mm的液体石蜡。 半固体类培养基 𐟍Š固体类培养基中通常含有少量的琼脂,需要先加热煮沸溶解均匀,然后分装到试管中。灭菌后摆直立,待凝固后备用。 固体类培养基 𐟍𐊥›𚤽“类培养基有几种常见的制备方式: 倒平板:将灭菌后冷却至50Ⰳ左右的完全培养基倾入无菌平皿即可。如果需要观察透明圈等现象,倾注平板不宜过厚。 摆直立:适用于观察需氧条件下的单项生化反应。灭菌后一般摆成长斜面(斜面:底层≈3:2),底层也可以更短,主要起固定作用。 高层斜面:适用于观察复合生化反应结果,同时需观察有氧和缺氧部分。灭菌后需摆高层斜面(斜面:底层≈2:3),使用的试管塞必须具有良好的透气性。 小贴士 𐟒እ葉Œ全灭菌的培养基,通常建议先加热溶解分装,再进行灭菌处理。对于灭菌后还需添加不稳定成分的培养基,则需先灭菌,冷却后加入不稳定成分,再分装至无菌器皿。 希望这些小技巧能帮到你们,祝大家在化验员的道路上越走越远!𐟚€

𐟔젨🞦Ž娽쥌–的实验步骤大揭秘!𐟔 𐟓š 想要了解连接转化的步骤吗?这里为你详细揭晓! 1️⃣ 扩增目的序列:首先,进行目的序列的扩增,使用50微升体系进行胶回收或产物回收。 2️⃣ 连接反应:采用无缝克隆技术,使用T4连接酶,按照说明书进行连接反应。连接体系如图所示。 3️⃣ 短暂离心:将混合物短暂离心,确保所有成分混合均匀。 4️⃣ 孵育:将混合物放入PCR仪,37℃孵育30分钟。在此期间,可以准备超净台、水浴锅和解冻感受态细胞。 5️⃣ 感受态细胞处理:将50感受态细胞与5目的序列回收产物混合,使用移液枪轻柔搅匀。 6️⃣ 水浴激活:将混合物放入42℃水浴中90秒,然后迅速冰浴2分钟。 7️⃣ 复苏细菌:加入800预热的液体培养基(LB),放入37℃摇床,220r,孵育1小时。 8️⃣ 离心收集:7500rmp离心1分钟,吸取600上清液弃去,剩余菌液重悬。 9️⃣ 平板涂布:将重悬菌液涂布在含有玻璃珠的平板上,封板后37℃培养12-20小时。 𐟔Ÿ 观察结果:培养完成后,观察平板上的菌落生长情况,以确认连接转化是否成功。 𐟒ᠦ𘩩樦示:在进行实验前,请确保所有仪器和材料都已准备好,并按照步骤逐步操作,祝你实验顺利!

植物细胞培养:悬浮与固定化技术的优势 在植物组织培养领域,MS固体培养基被广泛使用。然而,这种方法在某些方面存在局限性。例如,愈伤组织在生长过程中,营养成分和代谢物质的分布可能不均匀,琼脂本身也可能含有不明物质,这些因素可能影响植物组织的正常发育,甚至改变其代谢途径。 为了克服这些缺点,液体培养基被引入到植物细胞培养中。通过薄层震荡培养或向培养基中通气,可以改善氧气供应,促进植物组织的生长。这就是植物细胞的悬浮培养:将游离的单细胞或细胞团按照一定的细胞密度悬浮在液体培养基中,用摇床或转床进行培养的方法。 在此基础上,细胞固定化培养技术应运而生。这种技术将植物悬浮细胞包埋在多糖或多聚化合物(如聚丙烯)网状支持物中进行无菌培养。由于细胞处于静止状态,固定化培养可以促进细胞以多细胞状态或局部组织状态一起生长,从而为细胞提供一种最接近体内环境的环境。 与悬浮培养相比,固定化培养在多个方面表现出优势。首先,它提高了次生物质的合成和积累。其次,固定化培养能够长时间保持细胞活力,并且可以反复使用,这在实际应用中具有显著的经济效益。 通过这两种培养方式,植物细胞的培养技术得以不断优化和完善,为植物生物学研究和农业生产提供了强有力的技术支持。

𐟍𒌂肉汤培养基制作指南𐟧슰Ÿ”쌂培养基,全称Luria-Bertani Medium,是微生物学实验室的明星培养基!它特别适合培养大肠杆菌等常见菌种哦。 𐟥㥮ƒ的名字来源于lysogeny broth,意为“溶源肉汤”,最初是用来研究溶源性噬菌体与宿主的关系的。 𐟓配方来啦: - Tryptone(胰蛋白胨)10g/L,提供氮源和氨基酸。 - Yeast Extract(酵母膏)5g/L,提供氮源、维生素、生长因子和少量碳源。 - Sodium Chloride(氯化钠)10g/L,维持渗透压平衡和细胞稳定。 𐟒ጂ培养基可以做成液体或固体形式哦: - 液体LB培养基适合细菌大量扩增和表达外源基因。 - 固体LB培养基则是在液体基础上加了琼脂,用于菌落培养、筛选和计数。 𐟒‰想要筛选特定菌种?没问题!在LB培养基中加入抗生素如氨苄青霉素,就能筛选出携带抗性基因的转化子啦。加入伊红美蓝还能鉴定大肠杆菌等菌种呢!

𐟔婫˜压灭菌锅操作指南𐟔劰ŸŒŠ 确保水位与底座齐平,不足时请添加适量的水。 𐟔’ 盖上盖子,确保六个角对齐后拧紧,建议对角双手同时拧紧,并关闭盖子上的放气阀。 𐟔Œ 拧紧后按下绿色电源键,根据需要设置时间和温度,然后按下work键,绿色工作灯亮起。 𐟔„ 灭菌完成后,等待压力表降至0,温度降至80℃左右即可取出。 ⚠️ 灭液体类物品(如培养基)时,瓶子不要拧得太紧,稍微松一点。 ⚠️ 必须等待压力表降至0才能打开盖子。如果压力表降至0但盖子打不开,可以打开放气阀放气后再尝试打开。

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