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二代测序最新视觉报道_二代测序技术原理及流程(2024年12月全程跟踪)

内容来源:麦吉窗影视所属栏目:热点更新日期:2024-11-29

二代测序

酵母筛库:一场耐心的基因寻找之旅 𐟌𑊥œ詅𕦯双杂筛库的探索中,我们采取了分步转化的策略,期待能逐步揭开基因的神秘面纱。𐟔 经过一番努力,我们发现了大约30-40个变蓝的菌落,这让我们充满期待。我们送去了20个菌落进行测序,结果令人惊讶,15个菌落竟然指向了同一个基因。𐟘与此同时,我们也在进行mating筛库的实验。在三缺板上,我们观察到了30-50多个菌落的出现,这让我们兴奋不已。我们用这些菌落在四缺板上划线,希望能找到更多的单菌落。𐟌𑠧„𖨀Œ,出乎意料的是,不到三个小时,这些菌落就变蓝了,这让我们开始怀疑这些蓝色菌落是否与之前测序得到的15个菌落有关。 尽管如此,我们还是决定对所有蓝色菌落进行测序,这可能会花费我们3000-4000大洋。𐟒𘠦ˆ‘们相信,通过这次筛选,我们能更接近找到那些重要的基因。 有没有人曾经对所有单菌落进行过二代测序?我们想知道,这样的实验是否真的有必要,以及这样的实验会带来怎样的结果。𐟤” 我们期待着这次筛库之旅的最终结果,希望能从中获得更多关于酵母基因的宝贵信息。𐟌Ÿ

肺部积液+痰栓,纤支镜检测值不值? 肺部积液加上痰栓,医生建议做纤支镜检测,费用1500元自费,有必要吗?以下是详细信息: 纤支镜检测:通过纤支镜将痰栓取出,并进行相关检测。 费用:1500元自费。 检测内容:宏基因二代测序、结核xpert检查等。 送检机构:成都市某实验室。 取样时间:当天15点前。 结果时间:第二天上午出结果。 其他检测项目:结核xpert检查费用780元,结核pv检查费用700元。 通过这些信息,您可以更好地了解纤支镜检测的必要性,并根据个人情况做出决定。

ChIP-seq揭秘TF结合位点 ChIP-seq,全称染色质免疫沉淀-测序,是一种用于寻找特异性转录因子(TFs)结合位点的强大工具。它的实验过程可以分为以下几个步骤: 1️⃣ 固定连接:通过甲醛(formaldehyde)稳定蛋白质与DNA之间的连接,形成DNA-蛋白质交联。 2️⃣ 超声波裂解:在裂解缓冲液中,通过超声波分解与蛋白质结合的DNA。 3️⃣ 抗体纯化:加入特定的抗体,该抗体与磁性珠子结合,形成抗体-蛋白质-DNA复合物,并通过离心收集复合物。 4️⃣ 酶解分离:使用蛋白酶K(protease K)去除DNA和蛋白质之间的结合,然后对提取的DNA进行二代测序。 在数据分析方面,ChIP-seq的流程如下: Fastq数据质控:去除adapter并进行质控。 比对基因组:将Fastq文件比对到基因组上,生成Bam文件。 排序和去重:对Bam文件进行排序并去除重复序列。 寻找peaks并注释:寻找peaks并进行注释。 差异peaks计算:计算差异peaks并寻找其motif。 可视化:将结果进行可视化展示。 ChIP-seq的优势包括: 能够捕获整个基因组的转录因子或组蛋白修饰的DNA靶点。 定义转录因子结合位点。 结合RNA测序和甲基化分析,揭示基因调控网络。 然而,它也有一些局限性: 需要为每个转录因子(TF)制备抗体。 已知TF是必需的。 ChIP实验无法区分不同TF亚型(蛋白质亚型)。 ChIP-seq的应用范围非常广泛,包括: 寻找已知TF的结合位点。 通过Motif in all peaks,寻找TF结合的motif。 比较不同细胞中同一蛋白的peaks。 通过这些步骤和分析方法,ChIP-seq为研究基因调控和转录因子结合位点提供了强大的支持。

实验外包:你真的了解吗?𐟤” 实验外包其实是个挺普遍的现象,尤其是在实验室里,不是所有的实验都能自己搞定。比如,二代测序、转录组、蛋白质组学或者单细胞测序这些高大上的实验,基本上都是同学把样本准备好,送到我们这种公司去做,然后我们把数据返给他们,通常还会附带分析。𐟓Š 还有一种情况是自己实验室能做,但交给公司做更划算。比如病理学实验,自己取了组织后,如果自己处理,得买一大堆东西。而交给公司,他们不仅帮你做成蜡块或者切好,甚至有的实验室连克隆都是我们做的。𐟒𐊊最重要的一点是:实验外包并不违反学术道德!所以,有需要的同学可以放心联系我们。𐟔찟“쀀

𐟔 全外显子检测结果解析 𐟧슧퉥𞅤𚆤𘀤𘪦œˆ,终于迎来了全外显子检测的结果。𐟓… 检测显示有6个变异,其中1个被认定为致病性。𐟘㠩—传科医生表示没有问题,但我们的心情依然有些焦虑。𐟘Ÿ 为了求个心安,我们还进行了羊穿检查,结果却更加令人担忧。𐟘⊊胎儿的CNV结果没有问题,染色体核型为46,XN,inv(9)(12q13)。𐟧젦ˆ‘们也进行了染色体抽血化验,以确认是否遗传。𐟒‰ 原本希望通过羊穿得到更多信息,但结果却让我们更加困惑。 检测报告中提到了一些罕见变异,这些变异可能与某些临床症状相关,但具体的病性证握不够充分。𐟓 二代测序的结果显示,目标区域的平均深度和覆盖度都超过了99%,这表明检测的质量是可靠的。𐟔 在考虑是否需要进一步咨询上级医院时,我们感到非常困惑。𐟤” 有懂行的姐妹能帮忙看看这些结果吗?𐟑�𛻤𝕥𛺨ˆ–意见都将对我们有所帮助。𐟌Ÿ

二代测序比对软件大比拼:哪款最适合你? 今天我们来聊聊二代测序中常用的三款比对软件,它们在科研工作中各有千秋。 BWA:经典与现代的结合 𐟏† BWA(Burrows-Wheeler Aligner)是一个早期的比对工具,提供了三种不同的算法:BWA-MEM(用于单端和双端测序数据的全局比对)、BWA-SW(用于长读长的局部比对)、BWA-BACKTRACK(用于较短的reads)。你可以根据自己的需求选择合适的算法。虽然我个人使用频率不高,但它确实是经典中的经典。 论文:Li, H., & Durbin, R. (2009). Fast and accurate short read alignment with Burrows-Wheeler transform. Bioinformatics, 25(14), 1754-1760. Bowtie2:高效与准确的代表 𐟚€ Bowtie2采用了一种叫做“比对树”的索引结构,实现高效的比对。它支持单端和双端测序数据的全局比对,也可以进行局部比对,速度较快,对比准确率也较高。不过,它没有处理剪切位点的功能,因此不适合用来转录组的比较。我个人一般在染色质测序数据(如ChIP-seq、ATAC-seq等)的比对中使用。 论文:Langmead, B., & Salzberg, S. L. (2012). Fast gapped-read alignment with Bowtie 2. Nature Methods, 9(4), 357-359. STAR:转录组的得力助手 𐟌Ÿ STAR主要用于比对转录组测序数据,可以处理RNA-seq数据中的剪切事件,也能自动处理adapter。它功能丰富,比如可以直接输出gene counts,对bam排序等。如果你使用服务器且内存条件较好,它可以并行处理加快速度。如果你想用它比对染色质数据,在建立index时不要使用GTF,就不会考虑剪切事件,就可以应用在染色质比对数据上。 论文:Dobin, A., Davis, C. A., Schlesinger, F., Drenkow, J., Zaleski, C., Jha, S., ... & Gingeras, T. R. (2013). STAR: ultrafast universal RNA-seq aligner. Bioinformatics, 29(1), 15-21. 总结 𐟓 在平时的使用中,我个人会选择Bowtie2来处理染色质相关的比对,而STAR则是转录组比对的首选。希望这些信息能帮助你在选择比对软件时做出更明智的决策!

什么是ChIP-seq?一文带你搞懂! 𐟧젤𛀤𙈦˜IP-seq? ChIP-seq其实是个组合拳,包括染色质免疫共沉淀(ChIP)和二代测序(seq)。简单来说,ChIP是用来研究蛋白质和DNA之间相互作用的技术,而ChIP-seq则是通过二代测序来分析这些相互作用。这个技术主要有两大类应用:转录因子(TF)的ChIP-seq和组蛋白(Histone)的ChIP-seq。 转录因子的ChIP-seq 转录因子是那些能结合到基因上游特定序列上的蛋白质。它们就像反式作用因子,和真核基因的顺式作用元件(比如启动子、增强子)相互作用,从而激活或抑制基因的转录。所以,转录因子的ChIP-seq主要是用来确定这些蛋白质是否结合到特定的基因组区域,比如启动子或其他DNA结合位点。 组蛋白的ChIP-seq 组蛋白的ChIP-seq则主要是用来研究组蛋白修饰的情况。组蛋白是染色质的基本组成部分,它们的N端有一段富含赖氨酸和精氨酸的“尾巴”,这些尾巴上的氨基酸可以被各种修饰酶催化添加各种修饰基团,比如磷酸化、甲基化、乙酰化和泛素化等。这些修饰对基因表达的调控非常重要。 在组蛋白修饰中,甲基化和乙酰化是最常见的两种修饰。比如,H3K4me3、H3K36me3、H3K79me3等甲基化修饰通常激活转录,而H3K9me3、H3K27me3等甲基化修饰则抑制转录。通过组蛋白特异性抗体,我们可以将带有特定修饰的组蛋白-DNA复合物沉淀下来,然后通过测序来获取组蛋白在染色体上的分布情况,从而确定这些修饰相关的特定位点和修饰酶类的靶标。 结语 ChIP-seq技术在表观遗传学研究中有着非常重要的作用。无论是转录因子的研究还是组蛋白修饰的研究,这个技术都能提供非常宝贵的数据。如果你也在做相关的实验,不妨考虑一下这个强大的工具吧!

DeepTools:全能测序分析 DeepTools是一个专为二代测序数据设计的Python工具集,适合研究人员进行数据处理、可视化和分析。它支持多种类型的测序数据,包括ChIP-seq、RNA-seq和ATAC-seq。以下是DeepTools的主要功能和特点: 数据处理 𐟓ˆ DeepTools提供数据预处理功能,如排序、索引、过滤和修剪测序数据,以确保数据质量和一致性。 数据可视化 𐟎芄eepTools配备了多种可视化工具,包括热图生成、核苷酸分布绘制、染色体轨迹绘制和分布曲线绘制,帮助用户更好地理解实验数据。 质量控制 𐟛 ️ DeepTools可以评估测序数据的质量,进行GC含量分布、Nucleosome分析、PCR扩增偏差和唯一性分析等,以便在后续分析中排除不良样本。 差异分析 𐟔 DeepTools提供基因表达差异、染色质可及性差异和峰检测等工具,帮助研究人员识别基因或染色质上的差异性信号。 统计分析 𐟓Š DeepTools包含一系列统计工具,用于计算和比较各种测序数据的统计指标,以支持实验结果的统计显著性分析。 可扩展性 𐟌 DeepTools具有高度可扩展性,能够处理大规模的HTS数据集,并支持多线程处理以提高分析效率。 用户友好 𐟘Š DeepTools的命令行界面非常友好,还提供了详细的文档和示例,使用户能够轻松地进行数据分析。 DeepTools不仅功能全面,而且使用起来非常方便,是二代测序数据分析的理想选择。

全外显子组测序:技术优势与样品准备指南 𐟌Ÿ全外显子组测序(whole exome sequencing, WES)是一种利用序列捕获技术捕捉并富集全基因组外显子区域的DNA,然后进行高通量测序的基因组分析方法。WES主要用于遗传病检测,因为外显子组仅占基因组的2%,却包含约85%的致病突变。 𐟔WES的优势 高准确性:WES的准确性远高于二代测序,被视为测序行业的“金标准”。 高覆盖度:能够一次性分析SNV、INDEL、CNV、SV、FUSION等与疾病密切相关的变异。 经济高效:相比全基因组测序,WES检测目标区域明确,更加经济有效。 快速便捷:分析速度快且容易,对计算机配置要求较低。 𐟧ꦠ𗥓准备 新鲜组织:一般从手术台切下来的组织要求在50-100mg,可保存于RNAlater或低于-80度的环境中。如果是保存在RNAlater中,可室温运输,其他选择干冰运输。 FFPE组织:Formalin-Fixed Paraffin-Embedded(FFPE),即石蜡包埋组织,做成切片,厚度要求在5-10um之间,组织面积不小于1平方厘米,并且HE染色显示肿瘤细胞比例不低于50%,做好的切片不低于10张。 血浆:一般血浆在3-4ml,为避免反复冻融,分装在3-4个1.5ml离心管中,常用于提取ctDNA(循环肿瘤DNA),含量不能低于20ug,采取干冰或者冰袋运输即可。 外周血:一般外周血体积在6-8ml,EDTA抗凝管(紫色盖),80℃保存,采取干冰或者冰袋运输即可。 穿刺组织:一般样本直径1-2mm,长度不短于0.5cm,可保存于RNAlater或低于-80度的环境中,如果是保存在RNAlater中,可室温运输,其他选择干冰运输。 𐟓ŠWES产生VCF的过程 样本获取DNA,建库上机测序。 将bcl文件转为fastq文件。 fastq文件质控。 fastq文件转bam文件。 bam文件质控。 利用bam文件开始variant calling。 通过数据库过滤VCF。 对过滤之后的VCF进行注释分类。 对处理之后的VCF关联疾病注释数据库。 关联用药注释数据库,报告最后的突变。 𐟌测序技术发展 第一代测序技术:准确性高,但通量低,成本高。 第二代测序技术:通量高,成本低,但PCR过程中可能引入错误。 第三代测序技术:单分子测序,理论上可测定无限长度核酸序列,但目前技术尚未完全成熟。

Sanger测序:经典与现代的结合 𐟔Sanger测序,又被称为双脱氧链终止法,是一种由Frederick Sanger在1977年发明的经典DNA测序方法。因其高精度和在小规模测序项目中的广泛应用,至今仍被许多实验室所青睐。 𐟔쥟𚦜쥎Ÿ理: 构建反应系统:Sanger测序包括四个独立的反应,每个反应都包含所有四种脱氧核苷酸三磷酸(dNTP),并混入限量的一种不同的双脱氧核苷三磷酸(ddNTP)。ddNTP缺乏延伸所需的3-OH基团,因此当它们被DNA聚合酶掺入到正在合成的DNA链中时,会导致链的延伸在特定的碱基处终止。 扩增目的片段:以目的片段为模板,在DNA聚合酶的催化下,从引物处起始开始复制DNA。当遇到ddNTP时,反应停止,产生一系列不同长度的DNA片段,每个片段的终止点由ddNTP决定。 凝胶电泳:将这些终止的DNA片段通过高分辨率变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)进行分离。由于凝胶对不同长度的DNA片段有不同的迁移速度,因此可以通过电泳将它们分开。 序列读取:电泳后,通过检测凝胶上的荧光信号或放射自显影,可以读取DNA的碱基序列。每个ddNTP都有不同的荧光标记,因此可以通过荧光信号的不同来确定每个片段的终止碱基。 𐟓š应用领域: 𐟧짼–辑验证:用于验证CRISPR和TALEN等基因编辑技术的准确性。 mRNA制造质量控制:在mRNA疗法和疫苗生产中,用于序列确认。 二代测序确认:作为正交方法,用来确认二代测序(NGS)鉴定的变异。 微生物鉴定:通过16S rRNA Gene的Sanger测序进行微生物鉴定。 Sanger测序以其高准确性和可靠的结果,仍然是许多实验室和小规模研究的首选技术。尽管新一代测序技术在通量和速度上有所超越,但Sanger测序在特定应用中仍然不可替代。

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